貼壁細(xì)胞在培養(yǎng)時(shí)要貼附于培養(yǎng)（瓶）器皿壁上，細(xì)胞一經(jīng)貼壁就迅速鋪展，然后開始有絲分裂，并很快進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期。

貼壁細(xì)胞因其培養(yǎng)過程較為繁瑣，所以培養(yǎng)時(shí)更容易出現(xiàn)問題。小助手總結(jié)了貼壁細(xì)胞培養(yǎng)中常見的5種問題，并詳細(xì)介紹原因和解決方法，

若培養(yǎng)時(shí)遇到這些情況，可參考對(duì)應(yīng)解決方法處理。

一、貼壁細(xì)胞培養(yǎng)，細(xì)胞不貼壁

常見原因：胰蛋白酶消化過度；支原體污染；培養(yǎng)基pH值過堿（NaHCO3分解）；細(xì)胞老化；接種細(xì)胞起始濃度太低或太高。

解決方法：縮短胰蛋白酶消化時(shí)間或降低胰蛋白酶濃度；分離培養(yǎng)物，檢測(cè)支原體。清潔支架或培養(yǎng)箱。如發(fā)現(xiàn)支原體污染，丟棄培養(yǎng)物；

使用無菌醋酸溶液調(diào)整pH值或充入無菌CO2；啟用新的保種細(xì)胞；調(diào)節(jié)最佳接種細(xì)胞濃度。

二、傳代后部分細(xì)胞漂浮

常見原因及解決方法：

1、傳代前細(xì)胞密度太大：一般細(xì)胞匯合度達(dá)到80%時(shí)可進(jìn)行傳代操作，傳代密度需適中，傳代密度過高也會(huì)導(dǎo)致傳代后漂?。?/span>

2、細(xì)胞狀態(tài)不好：可通過提高血清比例、穩(wěn)定培養(yǎng)環(huán)境等方法進(jìn)行改善；

3、吹打次數(shù)過多造成機(jī)械損傷：輕柔吹打，細(xì)胞呈單顆粒時(shí)可停止吹打，吹打過程避免氣泡產(chǎn)生；

4、培養(yǎng)基更換后不適應(yīng)：更換回原來的培養(yǎng)基；或者與原培養(yǎng)基比例混合后使用，使細(xì)胞有個(gè)適應(yīng)期。

三、傳代后細(xì)胞成團(tuán)

解決方法：

1、低密度接種，延長(zhǎng)換液時(shí)間，防止細(xì)胞脫落；

2、使用多聚賴氨酸包被培養(yǎng)器皿，以增加細(xì)胞貼壁牢固度，降低細(xì)胞聚集成團(tuán)的幾率；

3、重新鋪板，并更換新配制的培養(yǎng)基，加大血清比例（增加比例不超過5%）；

4、接種時(shí)，減少培養(yǎng)基量（如T25加3mL）以加快細(xì)胞貼壁速度，等待細(xì)胞貼壁后（約8-12小時(shí)），再補(bǔ)加培養(yǎng)基到正常用量。

四、細(xì)胞生長(zhǎng)周期變慢，邊養(yǎng)邊漂

常見原因及解決方法：

1、細(xì)胞傳代時(shí)密度太稀或太密：建議細(xì)胞密度達(dá)80%左右進(jìn)行傳代，傳代密度適中，密度過低會(huì)延長(zhǎng)生長(zhǎng)周期；

2、傳代操作不當(dāng)：根據(jù)細(xì)胞特性決定細(xì)胞消化時(shí)間，一般在顯微鏡下觀察細(xì)胞回縮變圓并有少量細(xì)胞脫落即可終止消化，難消化的細(xì)胞可

分次消化，每次時(shí)間不超過5min；頻繁換液或者清洗細(xì)胞也會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞狀態(tài)變差，常規(guī)換液時(shí)間間隔為2~3天。

五、培養(yǎng)細(xì)胞生長(zhǎng)緩慢

常見原因：由于更換不同培養(yǎng)液或血清；培養(yǎng)液中一些細(xì)胞生長(zhǎng)必須成分如谷氨酰胺或生長(zhǎng)因子耗盡或缺乏或已被破壞；培養(yǎng)物中有少量

細(xì)菌或真菌污染；試劑保存不當(dāng)；接種細(xì)胞起始濃度太低；細(xì)胞已老化；支原體污染。

解決方法：比較新培養(yǎng)液與原培養(yǎng)液成分，比較新血清與舊血清支持細(xì)胞生長(zhǎng)實(shí)驗(yàn)，讓細(xì)胞逐漸適應(yīng)新培養(yǎng)液；換入新鮮配置培養(yǎng)液，

或補(bǔ)加谷氨酰胺及生長(zhǎng)因子；用無抗生素培養(yǎng)液培養(yǎng)，如發(fā)現(xiàn)污染，丟棄培養(yǎng)物；血清需保存在-10到-20℃。培養(yǎng)液需在2-8℃避光保存。

含血清培養(yǎng)液在2-8℃保存，需在1周內(nèi)用完；增加接種細(xì)胞起始濃度；換用新的保種細(xì)胞；分離培養(yǎng)物，檢測(cè)支原體。

清潔支架和培養(yǎng)箱。如發(fā)現(xiàn)支原體污染，丟棄培養(yǎng)物。